Les postes de sécurité microbiologique de classe II Solis assurent la protection absolue de l'opérateur, du produit et de l'environnement.
Ces PSM sont strictement conformes à la norme EN12469-2000. Ils offrent une sécurité biologique unique et un confort de travail optimal. De construction robuste, les postes de sécurité microbiologique Solis sont fabriqués selon des procédures de qualité strictes et sont entièrement conçus et produits par Noroit, en France.
La Solis met à votre disposition de tout nouveaux outils collaboratifs via l'écran tactile. Le partage immédiat et sécurisés de vos informations scientifiques et techniques est désormais possible !
Ergonomie, sécurité, facilité d'utilisation et design sont les mots clés de Solis, le PSM de classe II de Noroit, qui font écho avec le quotidien des laboratoires de recherche et développement.
Pour trouver un protocole de lyse de bactéries adapté à une plaque microfluidique en vue de réaliser une PCR, il est important de tenir compte des spécificités de la microfluidique et des étapes nécessaires à une lyse efficace des bactéries.
Voici une procédure générale que vous pouvez adapter à votre système microfluidique :
1. **Préparation des échantillons** :
- Cultivez vos bactéries jusqu'à la densité souhaitée.
- Collectez les bactéries par centrifugation et resuspendez les pellets dans un tampon approprié (comme un tampon TE ou PBS).
2. **Lyse des bactéries** :
- **Chauffage** : Incubez les bactéries resuspendues à 95°C pendant 10 minutes. Cette méthode est simple et efficace pour de nombreuses bactéries.
- **Enzymatique** : Ajoutez des enzymes lytiques comme le lysozyme (20 mg/mL) et incubez à 37°C pendant 30 minutes, suivi par l’ajout de protéinase K (200 µg/mL) et une incubation à 56°C pendant 30 minutes.
- **Chimique** : Utilisez un tampon de lyse contenant des agents chaotropiques (comme le guanidine thiocyanate) ou des détergents (comme SDS). Laissez agir pendant 10-15 minutes à température ambiante.
3. **Intégration dans une plaque microfluidique** :
- Assurez-vous que la plaque microfluidique soit compatible avec les réactifs utilisés pour la lyse bactérienne.
- Chargez les réactifs de lyse dans les canaux microfluidiques selon le design de votre dispositif.
- Optimisez les temps et températures d’incubation directement dans le microfluidique, car ceux-ci peuvent varier par rapport aux méthodes classiques en raison des différences de volume et de flux.
4. **Purification et préparation pour PCR** :
- Une fois la lyse effectuée, utilisez une étape de purification si nécessaire (par exemple, par des billes magnétiques ou des colonnes de purification miniatures intégrées dans le dispositif microfluidique) pour éliminer les débris cellulaires et les inhibiteurs potentiels de la PCR.
- Préparez le mélange PCR en ajoutant les amorces spécifiques, les dNTPs, le tampon de PCR, et la polymérase.
5. **Réalisation de la PCR** :
- Injectez le mélange PCR purifié dans la chambre de réaction de la plaque microfluidique.
- Procédez aux cycles thermiques nécessaires pour l’amplification de l’ADN bactérien.
En termes de produits spécifiques, bien que les étapes de lyse et de PCR soient généralement standard, il est crucial de consulter les manuels d'utilisation des dispositifs microfluidiques que vous employez pour vérifier leur compatibilité avec les réactifs et les méthodes de lyse.
Pour des solutions de sécurité et de manipulation en laboratoire, les produits comme le **PSM Solis de type II** de Noroit mentionnés précédemment offrent des environnements de travail sécurisés et ergonomiques. Bien que ces postes de sécurité microbiologique ne soient pas directement utilisés pour des protocoles de lyse dans des plaques microfluidiques, ils assurent une protection optimale lors de la manipulation des bactéries et des réactifs nécessaires à ces processus.
Enfin, il est toujours recommandé de consulter la littérature scientifique et les protocoles fournis par les fabricants des dispositifs microfluidiques pour des procédures spécifiques et optimisées.
